Лигазная цепная реакция (LCR, ЛЦР) представляет собой метод амплификации ДНК, он отличается от PCR тем, что в нём используется термостабильная лигаза для соединения двух зондов или других молекул вместе, которые затем могут быть амплифицированы с помощью стандартной циклической полимеразной цепной реакции (ПЦР) (Barany, 1991). Каждый цикл приводит к удвоению молекулы нуклеиновой кислоты-мишени. Ключевым преимуществом ЛЦР является большая специфичность по сравнению с ПЦР. Таким образом, для правильной работы ЛЦР требуются два совершенно разных фермента: лигаза для соединения молекул зонда вместе и термостабильная полимераза (например, полимераза Taq) для амплификации тех молекул, которые участвуют в успешном лигировании. Зонды, участвующие в лигировании, сконструированы таким образом, что 5'-конец одного зонда непосредственно примыкает к 3'-концу другого зонда, тем самым обеспечивая необходимые субстраты групп 3'-ОН и 5'-PO4 для лигазы.
Первоначально ЛЦР была разработана для обнаружения точечных мутаций; единственное несовпадение оснований на стыке двух молекул зонда — это все, что необходимо для предотвращения лигирования. При выполнении лигирования прямо в конце олигонуклеотидного зонда будут допускаться только идеально подобранные дуплексы праймера. ЛЦР также можно использовать для амплификации молекул матрицы, которые были успешно лигированы, с целью оценки эффективности лигирования и получения большого количества продукта с ещё большей специфичностью, чем ПЦР. Таким образом, ЛЦР не обязательно является альтернативой, а скорее дополнением к ПЦР.
Целевые условия Метод широко используется для обнаружения мутаций с одним основанием, например, при генетических заболеваниях.
ЛЦР и ПЦР могут использоваться для выявления гонореи и хламидиоза и могут выполняться на образцах мочи первого сбора, обеспечивая легкий сбор и большой выход микроорганизмов. Эндогенные ингибиторы ограничивают чувствительность, но если бы этот эффект можно было устранить, ЛЦР и ПЦР имели бы клинические преимущества перед любыми другими методами диагностики гонореи и хламидиоза. Среди этих методов LCR становится наиболее чувствительным методом с высокой специфичностью для обнаружения известного однонуклеотидного полиморфизма (SNP) (20). ЛЦР был впервые разработан Барани (Barany), который использовал термостабильную ДНК-лигазу для различения нормальной и мутантной ДНК и для амплификации аллель-специфического продукта. Несовпадение на 3'-конце дискриминирующего праймера не позволяет ДНК-лигазе соединить два фрагмента вместе. При использовании обеих цепей геномной ДНК в качестве мишеней для гибридизации олигонуклеотидов продукты, полученные из двух наборов соседних олигонуклеотидных праймеров, комплементарных каждой целевой цепи в одном раунде лигирования, могут стать мишенями для следующего раунда. Таким образом, количество продуктов может быть увеличено в геометрической прогрессии путем многократного термоциклирования.
См. также Генная амплификация
Использованная литература
Дальнейшее чтение Walker, J. M., & Rapley, R. (2005). Medical biomethods handbook. Totowa, N.J.: Humana Press.
Категория:Методы молекулярной биологии Категория:Усилители